背景

脂多糖（lipopolysaccharide，LPS），又稱內(nèi)毒素，為革蘭氏陰性菌細(xì)胞壁外壁的組成成分，可作用于膜受體激活多種細(xì)胞（巨噬細(xì)胞、上皮細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞等）信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)系統(tǒng)，促進(jìn)促炎細(xì)胞因子和其他炎性介質(zhì)的合成及釋放，引發(fā)炎癥反應(yīng)?？蛻舨捎肔PS誘導(dǎo)RAW264.7巨噬細(xì)胞建立體外炎癥模型，使用超聲波細(xì)胞粉碎機(jī)將蛋白及核酸從炎癥細(xì)胞中分離出來(lái)，從基因、蛋白相對(duì)表達(dá)水平方面評(píng)估羊棲菜多酚（Hizikia fusiformis polyphenols，HFPs）的抗炎活性，為其在新型抑炎制劑的開發(fā)利用提供理論依據(jù)。

材料與方法

1.1?棲菜多酚的制備

取?燥?棲菜粉末，加?體積分?jǐn)?shù)60%?醇溶液，使?SCIENTZ-IID超聲輔助浸提（料液?1∶20（m/V）、50 ℃、60 min），抽濾后真空減壓蒸餾去除?醇，獲?棲菜粗多酚溶液，依次采?等體積?油醚、?酸?酯分級(jí)萃取，真空減壓蒸餾后凍?（使?SCIENTZ-12N過(guò)夜凍?），獲得HFPs粉末。測(cè)得HFPs粉末總酚含量為23.67±0.24 mg/g。利??菌?配制成多酚?液，再以細(xì)胞培養(yǎng)液稀釋?不同濃度，?于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

1.2 炎癥細(xì)胞培養(yǎng)

使?完全培養(yǎng)基（含10%（體積分?jǐn)?shù)，下同）胎??清和1%?鏈霉素雙抗DMEM培養(yǎng)基）培養(yǎng)RAW264.7細(xì)胞，37 ℃、5% CO2培養(yǎng)，細(xì)胞融合度約80%時(shí)進(jìn)?傳代。然后分成3組進(jìn)?培養(yǎng)：①陰性對(duì)照組，僅加?含10%胎??清的DMEM培養(yǎng)基；②LPS陽(yáng)性對(duì)照組，加?含LPS（1μg/mL）和10%胎??清的DMEM培養(yǎng)基刺激24 h；③HFPs+LPS組，經(jīng)含不同質(zhì)量濃度（10、20、40、60、80、100、120、140、160、180、200、250、300、350 μg/mL）HFPs和10%胎??清的DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)24    h后，以含LPS（1 μg/mL）和10%胎??清的DMEM培養(yǎng)基刺激24h。

1.3 RAW264.7細(xì)胞炎癥相關(guān)基因相對(duì)表達(dá)量的測(cè)定

1.2中培養(yǎng)的三組細(xì)胞培養(yǎng)結(jié)束后棄去培養(yǎng)液，?0.01 mol/L、pH 7.2的磷酸鹽緩沖液（phosphate buffered saline，PBS）清洗細(xì)胞2 次，每孔加?500 μL TRIzol試劑，使?SCIENTZ-IID加速破碎細(xì)胞協(xié)助提取總RNA，超聲參數(shù)為：100 W，1 s 開1 s關(guān)，共1 min，并將RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA。以cDNA為模板，采?SYBR Green嵌合熒光法與引物進(jìn)?實(shí)時(shí)熒光定量PCR。測(cè)定?的基因（IL-1β、IL-6、TNF-α、COX-2、iNOS）和內(nèi)參基因次?嘌呤磷酸核糖基轉(zhuǎn)移酶1（hypoxanthine-guanine phosphoribosyl transferase，hprt1）Ct值，采?2－ΔΔCt法計(jì)算?的基因的相對(duì)表達(dá)量。

1.4 MAPKs、NF-κB信號(hào)通路關(guān)鍵蛋?相對(duì)表達(dá)量測(cè)定

1.2中培養(yǎng)的三組細(xì)胞培養(yǎng)結(jié)束后棄去培養(yǎng)液，?0.01 mol/L、pH 7.2的磷酸鹽緩沖液（phosphate buffered saline，PBS）清洗細(xì)胞2 次，加?200 μL RIPA細(xì)胞裂解液，使?SCIENTZ-IID加速破碎細(xì)胞協(xié)助提取蛋?質(zhì)，超聲參數(shù)為：100 W，1 s 開1 s關(guān)，共1 min，離?（12000 r/min、4 ℃）10 min取上清液。采?BCA蛋?質(zhì)量濃度測(cè)定試劑盒測(cè)定各組蛋?濃度，?蛋?上樣緩沖液調(diào)整蛋?質(zhì)量濃度為2 mg/mL，95 ℃加熱10 min使蛋?變性然后進(jìn)???烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝?電泳分離；濕轉(zhuǎn)到聚偏?氟?烯膜；5%（質(zhì)量分?jǐn)?shù)）脫脂奶粉（TBST溶液配制）封閉1 h；?抗4 ℃孵育12 h；?抗室溫孵育2 h；加?ECL試劑進(jìn)?顯?反應(yīng)，測(cè)定蛋?條帶灰度值。以β-actin為內(nèi)參，?的蛋?包括iNOS、p65、p-p65、p38、p-p38、JNK和pJNK，分別以p-p38/p38、p-JNK/JNK、p-p65/p65表?相應(yīng)蛋?磷酸化?平。

結(jié)果與分析

01.RAW264.7細(xì)胞炎癥相關(guān)基因相對(duì)表達(dá)量的測(cè)定結(jié)果

采?實(shí)時(shí)熒光定量PCR測(cè)定HFPs對(duì)LPS誘導(dǎo)的巨噬細(xì)胞中重要促炎細(xì)胞因?IL-1β、IL-6和接觸式超聲在胞內(nèi)蛋?及核酸提取過(guò)程中的應(yīng)?TNF-α基因相對(duì)表達(dá)量，以及炎癥相關(guān)酶COX-2基因相對(duì)表達(dá)量的影響。如圖1所?，LPS刺激不同時(shí)間后，所有炎癥介質(zhì)的mRNA表達(dá)?平均顯著提?（P＜0.05）。HFPs對(duì)促炎細(xì)胞因?的抑制作?與其劑量、LPS誘導(dǎo)時(shí)間及細(xì)胞因?種類相關(guān)。與LPS組相?，靜息狀態(tài)細(xì)胞經(jīng)HFPs處理再經(jīng)LPS誘導(dǎo)12、24 h后，IL-1β和IL-6的基因相對(duì)表達(dá)量顯著下降；HFPs顯著抑制LPS誘導(dǎo)3 h后TNF-α基因的相對(duì)表達(dá)，?在LPS誘導(dǎo)6?24 h的抑制作?總體不明顯。在LPS誘導(dǎo)24 h，較低劑量HFPs（30、60 μg/mL）預(yù)處理對(duì)COX-2基因表達(dá)具有顯著抑制作?，但提?劑量后該抑制效果消失，甚?出現(xiàn)反向促進(jìn)作?，120 μg/mL HFPs預(yù)處理促使COX-2相對(duì)表達(dá)量較LPS組顯著上升（P＜0.05）。

02.MAPKs、NF-κB信號(hào)通路關(guān)鍵蛋?相對(duì)表達(dá)量測(cè)定結(jié)果

采?蛋?免疫印跡法測(cè)定巨噬細(xì)胞中MAPKs和NF-κB信號(hào)通路關(guān)鍵蛋?的磷酸化?平。如圖2所?，與陰性對(duì)照組相?，LPS刺激3 h后細(xì)胞中p38、JNK和p65蛋?的磷酸化?平顯著升?（P＜0.05）。90、120 μg/mL HFPs預(yù)處理對(duì)LPS誘導(dǎo)的巨噬細(xì)胞中p38和p65的磷酸化產(chǎn)?顯著抑制作?（P＜0.05），且呈?定的劑量依賴性，但對(duì)JNK的磷酸化沒有顯著影響，表明HFPs的抗炎作?可能與其靶向作?于p38 MAPK和NF-κB p65有關(guān)。

總結(jié)

客戶采?LPS誘導(dǎo)RAW264.7巨噬細(xì)胞建?體外炎癥模型，使?超聲波細(xì)胞粉碎機(jī)將蛋?及核酸從炎癥細(xì)胞中分離出來(lái)，從基因、蛋?相對(duì)表達(dá)?平??評(píng)估?棲菜多酚（Hizikia fusiformispolyphenols，HFPs）的抗炎活性，為其在新型抑炎制劑的開發(fā)利?提供理論依據(jù)。超聲波細(xì)胞粉碎機(jī)在整個(gè)實(shí)驗(yàn)中起到作?如下：

1. 輔助提取?棲菜中多酚組分，加速多酚組分釋放，縮短了提取進(jìn)程，后續(xù)通過(guò)凍?步驟即可獲得?棲菜多酚粉末，溶解后備?；

2. 搭配TRIzol試劑對(duì)細(xì)胞中總RNA進(jìn)?提取，試劑中含有苯酚，可加速細(xì)胞破碎和核酸釋放，還加?核酸酶抑制物質(zhì)防?RNA降解，PCR結(jié)果表明提取的RNA濃度與純度較好，可?于相關(guān)基因表達(dá)情況的分析；

3. 搭配RIPA裂解液對(duì)細(xì)胞中的蛋?質(zhì)進(jìn)?提取，?幅減少原本冰上裂解所需時(shí)間（30 min），試劑中含有的蛋?酶抑制劑可防?蛋?降解，還含有磷酸酶抑制劑，防?蛋?提取后的再修飾，更好測(cè)定蛋?磷酸化狀態(tài)。